Twin-row planting practice in village sugarcane (Saccharum officinarum L.) plantations during first ratoon under rainfed conditions in northern Côte d’Ivoire

Paper Details

Research Paper 13/12/2025
Views (753)
current_issue_feature_image
publication_file

Twin-row planting practice in village sugarcane (Saccharum officinarum L.) plantations during first ratoon under rainfed conditions in northern Côte d’Ivoire

Allé Yamoussou Joseph, Sawadogo Fatima, Traoré Mohamed Sahabane, Fondio Lassina
Int. J. Biosci. 27(6), 91-101, December 2025.
Copyright Statement: Copyright 2025; The Author(s).
License: CC BY-NC 4.0

Abstract

This study aimed to determine an appropriate planting density for twin-row sugarcane cultivation during the immature phase under rainfed conditions, with the goal of improving agronomic performance. A randomized complete block design was employed, consisting of six treatments and three replications. The evaluated planting densities included twin rows spaced at 0.4 m and 0.5 m, combined with inter-row distances of 1.1 m, 1.3 m, 1.4 m, and 1.5 m. Observations focused primarily on growth parameters, weed infestation, and ground cover. Results indicated that planting density had no statistically significant effect on growth parameters across treatments. However, treatments T3 (twin-row spacing of 0.4 m; inter-row spacing of 1.4 m; middle inter-row spacing of 1.8 m) and T6 (twin-row spacing of 0.5 m; inter-row spacing of 1.3 m; middle inter-row spacing of 1.8 m) enhanced several agronomic traits, including the number of stalks, stools, and ratoons, as well as the soil ground cover.

Amoukou I. 2009. Un village nigérien face au changement climatique: stratégies locales d’adaptation au changement climatique dans une zone rurale du bassin du Niger. Université Abou Moumouni de Niamey, Niger, 95p.

Archimède H, Xande X, Gourdine JL, Fanchone A, Alexandre G. 2011. La canne à sucre et ses co-produits dans l’alimentation animale. Innovations Agronomiques 16, 165–179.

Bigot S, Yao TB, Oswald J, Diedhiou A. 2005. Facteur de variabilité pluviométrique en Côte d’Ivoire et relations avec certaines modifications environnementales. Sécheresse 16(1), 5–13.

Bowman G, Shirley C, Cramer C. 2000. Benefits of cover crops. In: Managing cover crops profitably, Sustainable Agriculture Network, 9–11.

Cheavegatti-Gianotto A, Abreu H, Arruda P, Bespalhok FJ, Burnquist W, Creste S, Ciero L, Ferro J, Oliveira FA, Sousa FT, Grossi-de-Sá M, Guzzo E, Hoffmann H, Andrade LM, Macedo N, Matsuoka S, Castro RF, Romano E, Silva W, Castro SFM, Ulian EC. 2011. Sugarcane (Saccharum × officinarum): a reference study for the regulation of genetically modified cultivars in Brazil. Tropical Plant Biology 4(1), 62–89.

CNRA. 2021. Programme canne à sucre. https://cnra.ci/wp-content/uploads/2021/12/05-Progr-canne-a-sucre-2020-2023-VF.pdf

Ekpélikpézé OS, Loko YL, Adjatin A. 2016. Évolution de la production de canne à sucre (Saccharum officinarum L.) et gestion paysanne de sa diversité variétale au Bénin. International Journal of Innovation and Scientific Research 20(2), 349–361.

Fahad S, Hussain S, Chauhan B, Saud S, Wu C, Hassan S, Tanveer M, Jan A, Huang J. 2015. Weed growth and crop yield loss in wheat as influenced by row spacing and weed emergence times. Crop Protection 71, 101–108.

Fauconnier R. 1991. La canne à sucre. Paris: Maisonneuve et Larousse, 165p.

Konaté ML, Mangara A, Diomandé S, Kouamé NF. 2025. Adventices majeurs des plantations villageoises de la canne à sucre dans le département de Ferkessédougou (Côte d’Ivoire). Journal of Animal & Plant Sciences 65(1), 12300–12309.

Kouamé KD. 2010. Évaluation agronomique de variétés de canne à sucre (Saccharum officinarum L., Poaceae) introduites au complexe sucrier de Ferké 2 au nord de la Côte d’Ivoire: proposition d’allègement du schéma de sélection. Doctoral thesis, Université de Cocody, Abidjan, Côte d’Ivoire, 260p.

Lefèvre A. 2018. Influence de la composition spécifique de couverts végétaux sur les paramètres physiques, chimiques et biologiques du système sol-plante: étude de la biologie du sol. Université catholique de Louvain. http://hdl.handle.net/2078.1/thesis:17267

Meslien S. 2009. La canne à sucre et ses enjeux aux Antilles françaises, des origines au début du XXe siècle. Fort-de-France: Centre Régional de Documentation Pédagogique de la Martinique, 160p.

Muli B, Mgeni A. 2020. Rainfed sugarcane production and yield variability in smallholder systems of Malawi. African Journal of Agricultural Research 15(12), 1456–1465.

Ouattara O. 2020. Effet de l’association canne à sucre–cultures vivrières sur la croissance de la canne à sucre en condition pluviale dans la région du Tchologo. Master thesis, Université Jean Lorougnon Guédé, 49p.

Pémé H. 2004. Étude des aspects de la maturation de la canne à sucre à SUCAF Gabon. Mémoire de fin de cycle, Institut Polytechnique Rural de Formation et de Recherche Appliquée de Katibougou (Mali), 48p.

Péné CB, Boua MB, Coulibaly-Ouattara Y. 2019. Nouvelles variétés de canne à sucre (Saccharum officinarum L.) adaptées aux conditions pluviales dans les périmètres sucriers de Ferké au Nord Côte d’Ivoire. Journal of Applied Biosciences 134, 13702–13710.

Péné CB, Kéhé M. 2005. Performance de trois variétés de canne à sucre soumises au rationnement hydrique en pré-maturation au Nord de la Côte d’Ivoire. Agronomie Africaine 17(1), 7–18.

Pouzet D, Martiné JF. 2000. Distribution spatiale des conseils en fertilisation de la canne à sucre. Saint-Denis: CIRAD–CA, 18p.

Zadi M, Turquin L, Péné CP. 2017. Évaluations agronomiques et technologiques des clones de canne à sucre présélectionnés au stade ligne à Ferkessédougou, Nord Côte d’Ivoire. Journal of Applied Biosciences 115, 11502–11512.

Related Articles

Intra-population genetic diversity modeling of date palm (Phoenix dactylifera L.) population in Niger

Adamou Ibrahim Maman Laouali*, Zango Oumarou, Alio Moussa Abdourazak, Rafiou Abdoulaye, Idi Saidou Sani, Idi Garba Nana Mariama, Bakasso Yacoubou, Int. J. Biosci. 29(3), 62-70, September 2026.

Biocontrol potential of indigenous Trichoderma isolates against Fusarium wilt of cotton in Tanzania: In vitro screening and screen-house validation

Fauzia Khalid Mpiganzila*, Alfonce Leonard, Lidia Munuo, Ernest Mbega, Agatha Aloyce, Int. J. Biosci. 29(3), 44-61, September 2026.

In vitro study of antioxidant, anti-inflammatory and antihyperglycemic activity of medicinal plants

T. K. Nishath*, P. Mathavi, V. Ambikapathy, P. Prakash, A. Panneerselvam, Int. J. Biosci. 29(3), 32-43, September 2026.

Association between the IL13 rs1800925 (-1112C/T) polymorphism and Schistosoma mansoni infection intensity in a population from western Côte d’Ivoire

Bernardin Ahouty Ahouty*, Abla Edwige Sokouri, Georges Bohoussou Kassi, Innocent Allépo Abé, Martial Kassi N’djetchi, Yaya Ouangbo Ouattara, Ornella Karmelle Lydia Dago, Mathurin Yao Koffi, Thomas Konan Konan, Mathurin N’Goran Koffi, Int. J. Biosci. 29(3), 20-31, September 2026.

Abattoir-based surveillance reveals geographic clustering and risk factors for bovine tuberculosis in Tanzania

Yohana Siyajali Anatory*, Beatus Lyimo, Blandina T. Mmbaga, Joram Buza, Int. J. Biosci. 29(3), 11-19, September 2026.

In vitro assessment of the anticancer activity of quinaldic acid against human breast cancer cells (MCF-7)

N. Medhavi, S. M. Sivasankaran, K. Selvakumar, K. Harish, S. Manoharan*, Int. J. Biosci. 29(3), 1-10, September 2026.

In silico molecular docking analysis of quinaldic acid against cancer related targets

N. Medhavi, K. Harish, S. M. Sivasankaran, K. Selvakumar, B. Vidhyambigai, S. Manoharan*, Int. J. Biosci. 29(2), 129-139, August 2026.

First records of Macrogyrodactylus clarii and six species of Quadriacanthus (Monogenea) infecting Clarias gariepinus (Burchell, 1822) across four localities in Senegal

Arfang Diamanka*, Abdou Toure, Sikhou Drame, Cheikh Diop, Ngor Faye, Int. J. Biosci. 29(2), 118-128, August 2026.